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      谷物種子萌發(fā)時淀粉酶活力的測定

      放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-07-08
       
      幾乎所有植物中都存在淀粉酶,尤其是萌發(fā)的禾谷類種子,淀粉酶活性最強(qiáng)。主要是α-淀粉酶和β-淀粉酶。種子萌發(fā)時,淀粉酶活性隨萌發(fā)時間迅速增加,將淀粉分解成小分子糖類,供幼苗生長。α-淀粉酶隨機(jī)水解淀粉的α-1,4-糖苷鍵,作為淀粉分解的起始酶而起主要作用;其水解產(chǎn)物為麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原糖;β-淀粉酶水解非還原端的第二個α-1,4-糖苷鍵,水解產(chǎn)物為麥芽糖,并能使一部分糊精糖化。本實驗以萌發(fā)種子為材料,測定其中α-淀粉酶和β-淀粉活性的差異。
      【原理】
      兩種淀粉酶具有不同理化特性,α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6以下迅速鈍化;β-淀酶不耐熱,在70℃下15min則被鈍化。據(jù)此,在測定時鈍化其中之一,就可以測定出另一種酶的活力,本實驗采用加熱鈍化β-淀粉酶測出α-淀粉酶活力,再與非鈍化條件下測得的總淀粉酶活力比較,求出β-淀粉酶活力。淀粉的水解產(chǎn)物麥芽糖及其它還原糖能與3,5-二硝基水楊酸試劑反應(yīng),使其還原生成紅色3-氨基-5-硝基水楊酸。在一定范圍內(nèi),其顏色深淺與淀粉酶水解產(chǎn)物的濃度成正比,可用麥芽糖(或葡萄糖)濃度表示,用比色法測定淀粉生成的還原糖的量,以單位重量樣品在一定時間內(nèi)生成的麥芽糖的量表示酶活力。
      【儀器與用具】
      分光光度計;離心機(jī);恒溫水;研缽;具塞刻度試管(25ml×13);刻度吸管(1ml,2ml,5ml各1支);容量瓶(50ml×2)。
      【試劑】
      麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)液(1mg/ml):稱取100mg麥芽糖,用蒸餾水溶解并定容至100ml;
      DNS試劑(3,5-二硝基水楊酸):精確稱取3,5-二硝基水楊酸1g,溶于20ml 12mol/L NaOH溶液中,加入50ml蒸餾水,再加入30g酒石酸鉀鈉,待溶解后用蒸餾水定容至100ml。蓋緊瓶塞,勿使CO2進(jìn)入。若溶液混濁可過濾后使用;
      0.1mol/L pH5.6的檸檬酸緩沖液:
      A液(0.1mol/L檸檬酸)—稱取分析純檸檬酸21.01g,用蒸餾水溶解并定容至1L;
      B液(0.1mol/L檸檬酸鈉)—稱取檸檬酸鈉29.41g用蒸餾水溶解并定容至1L;
      取A液55ml與B液145ml混勻,即為0.1mol/L pH5.6的檸檬酸緩沖液;
      1%淀粉溶液:稱取1g淀粉溶于100ml 0.1mol/L pH5.6的檸檬酸緩沖液中。
      【方法】
      1.酶液提。悍Q取25℃下萌發(fā)3~4天的小麥種子1.0g(芽長1.0~1.5cm),置研缽中,加少量石英砂和2ml蒸餾水,研磨成勻漿后轉(zhuǎn)入離心管中,用7ml蒸餾水分次將殘渣洗入離心管提取液在室溫下放置提取15~20min,每隔數(shù)分鐘攪動1次,使其充分提取。然后在3000rpm轉(zhuǎn)速下離心10min,將上清液倒入50ml容量瓶中,加蒸餾水定容至刻度,搖勻,即為淀粉酶原液。吸取上述淀粉酶原液5ml,放入50ml容量瓶中,用蒸餾水定容至刻度搖勻,即為淀分酶稀釋液。
      2.麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:取7支干凈的具塞刻度試管,編號,按表33-1加入試劑。
      表33-1 制作麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)曲線配方表
      試 劑
      管 號
      1
      2
      3
      4
      5
      6
      7
      麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)液(ml)
      0
      0.2
      0.4
      0.8
      1.2.
      1.6
      2.0
      蒸餾水(ml)
      2.0
      1.8
      1.6
      1.2
      0.8
      0.4
      0
      麥芽糖含量(mg)
      0
      0.2
      0.4
      0.8
      1.2
      1.6
      2.0
      3,5-二硝基水楊酸(ml)
      2
      2
      2
      2
      2
      2
      2
      搖勻,置沸水中浴中煮沸5min。取出后流水冷卻,加蒸餾水定容至20ml。以1號管作為空白調(diào)零點(diǎn),在540nm波長下比色測定。以麥芽糖含量為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
      3.酶活力的測定:取6支干凈的具塞刻度試管,編號,按表33-2進(jìn)行操作。
      表33-2 配活力的測定配方表
      操作項目
      管 號
      Ⅰ-1
      Ⅰ-2
      Ⅰ-3
      Ⅱ-1
      Ⅱ-2
      Ⅱ-3
      淀粉酶原液(ml)
      1.0
      1.0
      1.0
      0
      0
      0
      鈍化β-淀粉酶
      置70℃水浴中15min,取出后在流水中冷卻
      淀粉酶稀釋液(ml)
      0
      0
      0
      1
      1
      1
      DNS試劑(ml)
      2.0
      0
      0
      2.0
      0
      0
      預(yù)保溫
      40℃恒溫水浴中保溫10min
      1%淀粉溶液(ml)(40℃)
      1.0
      1.0
      1.0
      1.0
      1.0
      1.0
      保溫
      40℃恒溫水浴中準(zhǔn)確保溫5min
      DNS試劑(ml)
      0
      2.0
      2.0
      0
      2.0
      2.0
      搖勻,置沸水浴中5min,取出后冷卻,加蒸餾水至20ml。搖勻,在540nm波長下比色,記錄測定結(jié)果。
      4.結(jié)果計算:用Ⅰ-2、Ⅰ-3吸光度平均值與Ⅰ-1吸光度值之差,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出相應(yīng)的麥芽糖含量(mg),再按下式計算α-淀粉酶的活力(Aα),淀粉酶活性以麥芽糖mg·g﹣1·min﹣1表示:
      Aα=
      Ⅱ-2、Ⅱ-3吸光度平均值與Ⅱ-1吸光度值之差,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出相應(yīng)的麥芽糖含量(mg),按下式計算(α β)-淀粉酶總活力AT
      AT
      式中 A—淀粉酶活性,Aα為α-淀粉酶的活性,AT為淀粉酶總活性,主要是α、β淀粉酶的活性;
      Cα—α-淀粉酶水解淀粉生成的麥芽糖量(查標(biāo)準(zhǔn)曲線求值,以下同);
      CT—(α β)淀粉酶共同水解淀粉生成的麥芽糖量;
      V1—顯色所用酶液體積(ml);
      t—酶作用時間(min);
      Vt—樣液稀液總體積(α-淀粉酶為50ml,α β淀粉酶為500ml);
      FW—樣品鮮重(g)。
       

       

       
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