国产精品二区按摩片,亚州另类欧美综合一区,亚洲日韩国产一区二区,国产在线观看片免费人成视频

<dfn id="yldih"></dfn>
  • <ul id="yldih"><td id="yldih"></td></ul>

  • <dfn id="yldih"></dfn>
    1. <dfn id="yldih"></dfn>
      <ul id="yldih"></ul>
      VIP標(biāo)識(shí) 上網(wǎng)做生意,首選VIP會(huì)員| 設(shè)為首頁| 加入桌面| | 手機(jī)版| RSS訂閱
      食品伙伴網(wǎng)服務(wù)號(hào)
       

      大分子導(dǎo)入細(xì)胞技術(shù)

      放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-07-08

      大分子導(dǎo)入細(xì)胞技術(shù)

      外源核酸、多肽導(dǎo)入受體細(xì)胞的方法繁多,大致可分為三類:化學(xué)方法、物理化學(xué)方法和生物學(xué)方法。化學(xué)方法常見的有磷酸鈣沉淀法、DEAE葡聚糖轉(zhuǎn)染法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法和PEI介導(dǎo)轉(zhuǎn)染法等;物理方法有電穿孔法,基因槍粒子轟擊法等;生物學(xué)方法中,目前主要是利用病毒作為外源核酸、多肽導(dǎo)入的工具,通過病毒感染將外源核酸、多肽導(dǎo)入受體細(xì)胞內(nèi)。

      實(shí)驗(yàn)  細(xì)胞顯微注射技術(shù)

      [實(shí)驗(yàn)?zāi)康腯
      1 了解細(xì)胞顯微注射的基本原理
      2 掌握細(xì)胞顯微注射基本技術(shù)

      [實(shí)驗(yàn)原理]
      顯微注射技術(shù)是利用顯微操作系統(tǒng)和顯微注射技術(shù)將外源目的基因直接注入到受精卵的原核中,使外源基因整合到受體細(xì)胞的基因組內(nèi),再通過胚胎移植技術(shù)將整合有外源基因的受精卵移植到受體動(dòng)物的子宮內(nèi)發(fā)育,從而獲得轉(zhuǎn)基因動(dòng)物。它是目前基因轉(zhuǎn)移效率較好的一種基因轉(zhuǎn)移方法,可直接用不含有原核載體DNA片段的外源基因進(jìn)行轉(zhuǎn)移;外源基因的長度不受限制, 可達(dá)100kb ;實(shí)驗(yàn)周期相對(duì)比較短。它的不足之處是:需要昂貴精密的設(shè)備;顯微注射操作復(fù)雜,需專門技術(shù)人員;導(dǎo)入外源基因整合位點(diǎn)和拷貝數(shù)無法控制;常導(dǎo)致插入位點(diǎn)附近宿主DNA 片段缺失、重組等突變,可造成動(dòng)物嚴(yán)重的生理缺陷。盡管如此,由于顯微注射技術(shù)直接對(duì)基因進(jìn)行操作,整合率較高,因而仍是目前建立轉(zhuǎn)基因動(dòng)物極為重要的方法。
      顯微注射技術(shù)在植物、動(dòng)物的細(xì)胞發(fā)育研究的應(yīng)用,為研究體內(nèi)生理和體外的生化過程架起橋梁,將特定的分子探針及衍生的細(xì)胞間質(zhì)成分導(dǎo)入活體細(xì)胞,為研究控制細(xì)胞功能的調(diào)控機(jī)制提供了新的視野。

      [儀器、材料和試劑]
      (一) 儀器和用具:
      倒置顯微鏡(如Nikon TMS 和Diaphot 300/2;Zeiss Axiovert 100或135,或Axioskop FS);
      Leitz重型基座(用于安放顯微鏡和微操作儀);
      微操作儀:Leitz(手動(dòng)系統(tǒng),安在平臺(tái)上)或Eppendorf 5171(自動(dòng)軸向微注射系統(tǒng),可固定在顯微鏡的載物臺(tái)上);
      微注射器:Eppendorf 5242,也可選用螺旋推柄的玻璃注射器。
      拉針儀:水平拉針儀P87型(如Sutter Instrument Co.(Novato,USA)),或垂直拉針儀720型(如David Kopf Instruments(Tujunga,California,USA)。
      玻璃注射針頭:可購買廠商拉制好的商品,也可用拉針儀自行拉制(可參照[方法與步驟]中的1.1注射針頭的拉制)。
      細(xì)胞培養(yǎng)設(shè)備:細(xì)胞培養(yǎng)箱、超凈工作臺(tái)、塑料平皿和蓋玻片等。
      (二) 材料:
      (三) 試劑:
      緩沖培養(yǎng)基(含25mmol/L HEPES pH7.2);注射緩沖液(10mmol/L H2PO4-和HPO42-,pH7.2,84mmol/L K ,17mmol/L Na ,1mmol/L EDTA)

      [方法與步驟]
      1. 材料準(zhǔn)備
      1.1 注射針頭的拉制
      水平拉針儀:裝上一根毛細(xì)管,擰緊左右兩側(cè)的夾子,做好固定,并使其中間部位對(duì)準(zhǔn)加熱絲。設(shè)定好電流、拉力和時(shí)間。然后按開始鍵,等待毛細(xì)管被拉成兩個(gè)所需的微注射針頭。
      垂直拉針儀:把玻璃毛細(xì)管固定在上面的夾子上,使其對(duì)準(zhǔn)加熱絲后旋緊。抬起下面的滑夾,固定在毛細(xì)管上。調(diào)整熱度和螺線管范圍。
      使用拉針儀自行拉制的微注射針頭,最好使用硼硅酸鹽玻璃的毛細(xì)管?梢圆捎霉柰閷(duì)注射針頭進(jìn)行處理,以防樣品和培養(yǎng)基成分與玻璃的親水表面相互作用,從而引起針尖阻塞而影響注射。
      1.2 蓋玻片的處理
      1 把蓋玻片放在陶瓷或金屬架上,相互不要接觸。
      2 在裝有自來水的燒杯中,快速浸泡和沖洗。
      3 在紙巾上把架子控干,再放入盛有0.1mol/L HCl的燒杯中,溫育過夜。
      4 用自來水沖洗蓋玻片,每次10min,共5次。
      5 把架子浸入70%的乙醇中,溫育60min。
      6 用去離子水短暫沖洗,放在紙巾上控干。
      7 在室溫下自然干燥30min。
      8 在220~250℃烤6 h。
      1.3 顯微注射用細(xì)胞的準(zhǔn)備
      1 在注射前一天,把細(xì)胞鋪到直徑為10~15mm的蓋玻片上,每個(gè)蓋玻片250~1000個(gè)細(xì)胞。
      2 在注射前,把帶有需要注射細(xì)胞的蓋玻片轉(zhuǎn)移至新的組織培養(yǎng)皿中,迅速用金剛石筆在蓋玻片上劃一個(gè)十字或一個(gè)圓圈標(biāo)記(金剛石筆使用前用70%乙醇沖洗,并在超凈臺(tái)中用火焰燒一下),然后加入3ml有緩沖液的培養(yǎng)基。

      2.顯微注射操作過程
      2.1 針頭裝液
      1 使用無菌的微量加樣器從微注射針頭的后部加入0.5~1μl的注射樣品。
      2 使用玻璃毛細(xì)管拉出毛細(xì)管針頭,里面有與毛細(xì)管平行的細(xì)絲,有利于液體從后部向針頭方向運(yùn)動(dòng)。只需在針頭后部浸入1mm深度,不需使用手指或其他東西接觸,就足以使少量的樣品到達(dá)針尖部。
      2.2 針頭定位
      1 將裝液后的針頭的游離端安在連接器上,然后旋緊連接器以固定針頭,再將其固定到微操作儀的托針管上。
      2 把載有待注射細(xì)胞的蓋玻片轉(zhuǎn)移到里面有緩沖培養(yǎng)基的平皿中,將其放在中央。
      3 將培養(yǎng)皿放在顯微鏡載物臺(tái)上,盡量將蓋玻片上所畫圓圈的一個(gè)對(duì)準(zhǔn)光照的中心區(qū),這時(shí)光的亮度最好。
      4 用低倍物鏡對(duì)準(zhǔn)細(xì)胞調(diào)焦。
      5 將針頭推入視野中心,在視野中針頭呈陰影狀。
      6 輕輕的落下針頭,直至到達(dá)培養(yǎng)基中后停下。
      7 通過顯微鏡觀察,移動(dòng)針頭,必要時(shí)調(diào)整微操作儀,直到針頭的陰影在視野的上方。然后確定針頭的位置,使其約處在視野中心。
      8 輕輕下調(diào)針頭,直到針頭變得清晰一些
      2. 調(diào)到工作放大倍數(shù),調(diào)準(zhǔn)細(xì)胞焦距,找到針尖。
      3. 如果找不到,重新使用低倍鏡,盡量將針頭調(diào)到視野的中心,重復(fù)上述的步驟。
      10 小心下調(diào)針尖,直到其完全聚焦。
      1.3 顯微注射的操作
      2.3.1 手動(dòng)細(xì)胞核內(nèi)注射
      1 使用最低放大倍數(shù)(50×),把焦距對(duì)準(zhǔn)位于蓋玻片上注射標(biāo)記區(qū)域的細(xì)胞平面上。用肉眼將注射針頭對(duì)準(zhǔn)到照度最亮處的中心,降下針頭,直到進(jìn)入培養(yǎng)基。把針頭調(diào)入到視野的中心,輕輕放下針頭,直到看清楚為止。然后將放大倍數(shù)調(diào)至工作倍數(shù),即320×,對(duì)準(zhǔn)細(xì)胞表面調(diào)焦。將針頭調(diào)整到中心,下降針頭,對(duì)準(zhǔn)焦距。移動(dòng)顯微鏡載物臺(tái),使針尖對(duì)準(zhǔn)細(xì)胞核或核周的胞質(zhì)。
      2 小心落下針尖,使其進(jìn)入細(xì)胞核或核周的胞質(zhì)。
      3 使用注射器施加注射壓
      4 輕輕上提針頭,直到離開細(xì)胞。
      5 移動(dòng)顯微鏡載物臺(tái),找到下一個(gè)細(xì)胞,重復(fù)2~4步驟。
      2.3.2 自動(dòng)細(xì)胞核內(nèi)注射和細(xì)胞質(zhì)內(nèi)注射
      1 按上述手動(dòng)系統(tǒng)的方法將針頭調(diào)整至視野中間,不同的是通過控制面板自動(dòng)控制微操作部分。
      2 工作放大倍數(shù)為320×,下降針頭,使之觸及細(xì)胞核或核周間隙上方的細(xì)胞表面,直到細(xì)胞表面見到一個(gè)輕微的壓跡。
      3 通過控制部分,設(shè)定細(xì)胞核內(nèi)或細(xì)胞質(zhì)內(nèi)注射的定位參數(shù)。
      4 將針頭略提起,離開細(xì)胞表面幾微米,選擇一個(gè)新細(xì)胞,按下操縱桿上方的按鈕進(jìn)行微注射。針頭首先在水平面上做逆向軌跡運(yùn)動(dòng),然后朝向細(xì)胞做出一個(gè)迅速的軸向運(yùn)動(dòng),正好刺入細(xì)胞內(nèi)預(yù)先設(shè)定好的坐標(biāo)位置,這時(shí)微操作儀的控制部分,激活注射壓力,持續(xù)時(shí)間已經(jīng)預(yù)先設(shè)定好。針頭回到原來的位置。
      5 在必要的情況下,可以在控制面板上修正各種參數(shù),因?yàn)樯w玻片和平皿的表面不是十分平整,所以當(dāng)從蓋玻片的一個(gè)地方移動(dòng)到另一個(gè)地方進(jìn)行注射時(shí),一定要重新調(diào)整細(xì)胞核內(nèi)或細(xì)胞質(zhì)的坐標(biāo)。

      3 對(duì)注射了熒光標(biāo)記物的細(xì)胞的分析
      熒光標(biāo)記物,如FITC-葡聚糖等常用來作注射用標(biāo)記物,以分辨出已經(jīng)注射的細(xì)胞。濃度為0.25%~1%時(shí),這種物質(zhì)的毒性很小,而且在細(xì)胞增殖的2~4天仍可見。
      3.1 在PBS中輕輕沖洗注射過的細(xì)胞兩次。
      3.2 用甲醇(2min)或PFA/GA(5min)快速固定
      3.3 用去離子水快速?zèng)_洗蓋玻片。
      3.4 滴一滴Mowiol,將蓋玻片裝到載玻片上。

      [注意事項(xiàng)]
      1 在整個(gè)過程中,注射針尖應(yīng)遠(yuǎn)離人員和實(shí)驗(yàn)室中的儀器。注射針在持針器上安裝不牢時(shí),注射器、管子及注射針內(nèi)的壓力,可能將注射針射出。
      2 在反向充填液體時(shí),適當(dāng)?shù)卦陲@微鏡下觀察注射針尖,以決定在加壓時(shí)是否注射針阻塞或偏斜。阻塞通?赏ㄟ^將針尖輕輕敲擊一個(gè)固定物而得以緩解。針尖偏斜的注射針是適合于顯微注射的,但其使用應(yīng)做細(xì)微調(diào)整或補(bǔ)償注射中加壓所造成的額外偏斜。
      3 注射速度過快能擾亂細(xì)胞質(zhì)成分,細(xì)胞裂解或細(xì)胞從底層移位。當(dāng)注射體積小于估計(jì)的細(xì)胞體積的50%,并且注射樣品的流動(dòng)速度幾乎不導(dǎo)致可見的細(xì)胞質(zhì)移位時(shí),注射效果最好。
      4 用紫外光可看到注入標(biāo)記物后的活細(xì)胞,但會(huì)對(duì)細(xì)胞造成不可恢復(fù)的損傷,因此應(yīng)盡可能縮短紫外光照射時(shí)間。
      5 如果對(duì)已經(jīng)注射的細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光測(cè)定或其他處理,最好使用可固定的葡聚糖,以防在沖洗中造成標(biāo)記物的擴(kuò)散損失。


      磷酸鈣細(xì)胞轉(zhuǎn)染技術(shù)

      [實(shí)驗(yàn)?zāi)康腯
      1 了解細(xì)胞轉(zhuǎn)染技術(shù)原理和基本方法
      2 磷酸鈣沉淀法的基本技術(shù)要點(diǎn)

      [實(shí)驗(yàn)原理]
      磷酸鈣沉淀法是基于磷酸鈣-DNA復(fù)合物的一種將DNA導(dǎo)入真核細(xì)胞的轉(zhuǎn)染方法,磷酸鈣被認(rèn)為有利于促進(jìn)外源DNA與靶細(xì)胞表面的結(jié)合。磷酸鈣-DNA復(fù)合物粘附到細(xì)胞膜并通過胞飲作用進(jìn)入靶細(xì)胞,被轉(zhuǎn)染的DNA可以整合到靶細(xì)胞的染色體中從而產(chǎn)生有不同基因型和表型的穩(wěn)定克隆。這種方法首先由Graham和van der Ebb使用,后由Wigler修改而成?蓮V泛用于轉(zhuǎn)染許多不同類型的細(xì)胞,不但適用于短暫表達(dá),也可生成穩(wěn)定的轉(zhuǎn)化產(chǎn)物。

      [儀器、材料和試劑]
      1 呈指數(shù)生長的真核細(xì)胞(如HeLa,BALB/c 3T3,NIH 3T3,CHO,或鼠胚胎成纖維細(xì)胞)
      2 完全培養(yǎng)液(依所用的細(xì)胞系而定)
      3 CsCl純化的質(zhì)粒DNA (10~50μg/次轉(zhuǎn)染,二次純化)
      4 2×HEPES緩沖鹽水(HeBS)
      (pH6.95~7.05) 50.0mmol/L HePes;280mmol/L NaCl;10mmol/L KCl;1.5mmol/L葡萄糖。用0.5mmol/L NaOH調(diào)pH至6.95~7.05,過濾除菌后,-20℃保存?zhèn)溆谩?br />5 2.5mol/L CaCl2過濾除菌,-20℃保存?zhèn)溆谩?br />6 磷酸緩沖鹽水(PBS)
      7 37℃,5%CO2的加濕培養(yǎng)箱
      8 100mm組織培養(yǎng)平板
      9 15ml錐形管

      [方法與步驟]
      1 傳代細(xì)胞準(zhǔn)備 細(xì)胞在轉(zhuǎn)染前24h傳代,待細(xì)胞密度達(dá)50%~60%滿底時(shí)即可進(jìn)行轉(zhuǎn)染。加入沉淀前3~4h,用9ml完全培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞。
      2 DNA沉淀液的準(zhǔn)備 首先將質(zhì)粒DNA用乙醇沉淀(10~50μg/10cm平板),空氣中晾干沉淀,將DNA沉淀重懸于μL無菌水中,加50μL2.5mol/L CaCl2。
      3 用巴斯德吸管在500μL 2×HeBS中逐滴加入DNA-CaCl2溶液,同時(shí)用另一吸管吹打溶液,直至DNA-CaCl2溶液滴完,整個(gè)過程需緩慢進(jìn)行,至少需持續(xù)1~2min。
      4 室溫靜置30min,出現(xiàn)細(xì)小顆粒沉淀。
      5 將沉淀逐滴均勻加入10cm平板中,輕輕晃動(dòng)。
      6 在標(biāo)準(zhǔn)生長條件下培養(yǎng)細(xì)胞4~16h。除去培養(yǎng)液,用5ml 1×HeBS洗細(xì)胞2次,加入10ml完全培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞。
      7 收集細(xì)胞或分入培養(yǎng)皿中選擇培養(yǎng)。

      [注意事項(xiàng)]
      1 在整個(gè)轉(zhuǎn)染過程中都應(yīng)無菌操作。
      2 為獲得最佳實(shí)驗(yàn)結(jié)果,DNA應(yīng)不含蛋白質(zhì)和酚。乙醇沉淀后的DNA應(yīng)保持無菌,并在無菌水或Tris EDTA中溶解。
      3 沉淀物的大小和質(zhì)量對(duì)于磷酸鈣轉(zhuǎn)染的成功至關(guān)重要。在磷酸鹽溶液中加入DNA-CaCl2溶液時(shí)需用空氣吹打,以確保形成盡可能細(xì)小的沉淀物,因?yàn)槌蓤F(tuán)的DNA不能有效地粘附和進(jìn)入細(xì)胞。
      4 在實(shí)驗(yàn)中使用的每種試劑都必須小心校準(zhǔn),保證質(zhì)量,因?yàn)樯踔疗x最優(yōu)條件十分之一個(gè)pH都可能導(dǎo)致磷酸鈣轉(zhuǎn)染的失敗。

       

      電穿孔和電融合技術(shù)

      【實(shí)驗(yàn)?zāi)康摹?br />1.了解細(xì)胞電穿孔和電融合的基本原理
      2.學(xué)習(xí)電穿孔和電融合基本技術(shù)

      【實(shí)驗(yàn)原理】
      當(dāng)細(xì)胞置于非常高的電場(chǎng)中,細(xì)胞膜就變得具有通透性,能讓外界的分子擴(kuò)散進(jìn)細(xì)胞內(nèi),這一現(xiàn)象稱為電穿孔。運(yùn)用這一技術(shù),許多物質(zhì),包括DNA、RNA、蛋白質(zhì)、藥物、抗體和熒光探針都能載入細(xì)胞。作為一種基因轉(zhuǎn)導(dǎo)方法,電穿孔已被廣泛用于各種細(xì)胞類型,包括細(xì)菌、酵母、植物和動(dòng)物細(xì)胞;而且,它還能作為注射方法(稱為電注射),把各種外源物質(zhì)引入活細(xì)胞。與其他常用的導(dǎo)入外源物質(zhì)的方法相比,電穿孔具有很多優(yōu)點(diǎn)。首先,不必象顯微注射那樣使用玻璃針,不需要技術(shù)培訓(xùn)和昂貴的設(shè)備,可以一次對(duì)成百萬的細(xì)胞進(jìn)行注射。第二,與用化學(xué)物質(zhì)相比,電穿孔幾乎沒有生物或化學(xué)副作用。第三,因?yàn)殡姶┛资且环N物理方法,較少依賴細(xì)胞類型,因而應(yīng)用廣泛。實(shí)際上,對(duì)大多數(shù)細(xì)胞類型,用電穿孔法基因的轉(zhuǎn)移效率比化學(xué)方法高得多。
      除了能使細(xì)胞膜具有通透性,讓外界的分子擴(kuò)散入胞液中以外,高強(qiáng)度的電場(chǎng)脈沖也能引起細(xì)胞融合,這一現(xiàn)象叫做電融合。然而,在用電脈沖融合前必須使細(xì)胞相互緊密接觸,這一電融合方法在原生質(zhì)融合制取雜交植物,胚胎細(xì)胞相互融合制備動(dòng)物克隆方面非常有用,尤其在制取雜交瘤細(xì)胞制備單克隆抗體方面用處很大。幾個(gè)實(shí)驗(yàn)室已證明使用電場(chǎng)電融合效率比常規(guī)的化學(xué)融合方法高10到100倍,最近,貼壁細(xì)胞的電融合還被用來研究細(xì)胞融合時(shí)細(xì)胞的骨架成分和細(xì)胞器的動(dòng)力學(xué)重排。

      【儀器、材料和試劑】
      儀器:脈沖發(fā)生器;樣品池(一個(gè)盛細(xì)胞的容器和兩個(gè)平行的金屬電極);CO2培養(yǎng)箱,顯微鏡;離心機(jī),微量移液器,鑷子,剪刀,手術(shù)刀片,三角瓶,吸管,毛細(xì)管,離心管,載玻片,蓋玻片,NALGEN一次性濾器。
      材料:外源DNA,對(duì)數(shù)生長中期細(xì)胞
      試劑:
      穿孔介質(zhì)(PM):磷酸鉀 15mmol/L
      MgCl2  1mmol/L
      蔗糖(或甘露醇) 250mmol/L 
      HEPES 10mmol/L 調(diào)節(jié)pH至7.3
      融合介質(zhì)(FM):MgCl2 1mmol/L
      甘露醇 280mmol/L
      HEPES  2mmol/L 調(diào)節(jié)pH至7.3

      【方法與步驟】
      懸浮細(xì)胞的電穿孔法:
      1.電穿孔進(jìn)行基因轉(zhuǎn)移
      電穿孔可用于將多種不同類型的分子載入活細(xì)胞中,操作步驟相似。本實(shí)驗(yàn)中,我們以基因轉(zhuǎn)移為例。載入其他的分子時(shí),只需把外源DNA換成所需分子即可。
      1.1 使細(xì)胞在適宜的培養(yǎng)基中生長,用胰酶處理,收獲對(duì)數(shù)生長中期的細(xì)胞,并用腺酶處理。
      1.2 在穿孔介質(zhì)(PM)中至少洗一次。洗細(xì)胞時(shí),在臺(tái)式離心機(jī)上1000rpm離心3分鐘,使得懸浮細(xì)胞沉降。然后,去掉上清液,在新的介質(zhì)中重新懸浮細(xì)胞。
      1.3 計(jì)數(shù)細(xì)胞,在PM中,濃縮細(xì)胞為大約1千萬細(xì)胞/ml。
      1.4 將DNA加到細(xì)胞懸液中,充分混合,使DNA均勻分散,用吸管吸一定體積的細(xì)胞-DNA混合液到裝有電極的滅菌小樣品池中。
      1.5 在電穿孔裝置上設(shè)置輸出電壓和脈沖寬度(脈沖寬度是指數(shù)衰減函數(shù)的時(shí)間常數(shù),即τ=RC,C是電容,R是樣品的電阻)。假如設(shè)備是CD脈沖型發(fā)生器,設(shè)定電容和并聯(lián)電阻,以達(dá)到合適的τ值。
      1.6 將小池放進(jìn)盛樣品的池中,啟動(dòng)電穿孔裝置,供給所需的電脈沖。
      1.7 電處理后,向小池加1ml普通培養(yǎng)基,將細(xì)胞混合液從小池轉(zhuǎn)移到組織培養(yǎng)容器(培養(yǎng)皿或培養(yǎng)孔)中,再加入一些培養(yǎng)基使最終的培養(yǎng)基體積適量。然后,將樣品細(xì)胞放回孵育箱中使之在正常條件下生長。
      1.8 在測(cè)定轉(zhuǎn)移基因的表達(dá)量前電穿孔細(xì)胞各自培養(yǎng)的時(shí)間不同。
      2.檢測(cè)電穿孔效率和細(xì)胞存活率
      2.1 除用羅丹明偶聯(lián)葡聚糖(1mg/ml)(分子探針)代替DNA外,將羅丹明偶聯(lián)葡聚糖引入目標(biāo)細(xì)胞的方法如前所述。
      2.2 電穿孔后,用培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞兩次,去掉胞外的熒光葡聚糖。
      2.3 電穿孔后30min,向細(xì)胞懸液中加30μl臺(tái)盼藍(lán),孵育2min,然后用培養(yǎng)基洗滌。
      2.4 在1000rpm下離心3min,收集細(xì)胞,將細(xì)胞重懸于PM中,終體積100μl。
      2.5 將一滴細(xì)胞液(30μl)置于干凈載玻片上,用蓋玻片蓋好,在顯微鏡下檢測(cè)細(xì)胞,測(cè)定攝取熒光標(biāo)記葡聚糖的百分?jǐn)?shù)。
      2.6 在亮視野鏡片下,死細(xì)胞可因染成藍(lán)色檢測(cè)出(攝取了臺(tái)盼藍(lán)),測(cè)定細(xì)胞存活的百分?jǐn)?shù)。
      2.7 在各種電場(chǎng)設(shè)定值下重復(fù)實(shí)驗(yàn),畫出攝取葡聚糖率和細(xì)胞存活率對(duì)電穿孔參數(shù)的曲線。這一曲線就將顯示對(duì)特定細(xì)胞類型電穿孔的最優(yōu)條件。

      懸浮生長細(xì)胞的電融合
      融合懸浮細(xì)胞的步驟與電穿孔的很類似,只是在進(jìn)行高強(qiáng)度的電場(chǎng)脈沖前后,必須用低幅、高頻電場(chǎng)使細(xì)胞排成一條鏈。
      1.用融合介質(zhì)(FM)洗懸浮細(xì)胞兩次,然后懸于FM中。洗滌細(xì)胞時(shí),在臺(tái)式離心機(jī)上1000rpm下離心3分鐘,得到細(xì)胞沉淀,棄去上清液將細(xì)胞懸于新鮮FM介質(zhì)中。
      2.將懸浮細(xì)胞轉(zhuǎn)移到相應(yīng)的融合室內(nèi)。假如要使兩種不同的細(xì)胞彼此融合,轉(zhuǎn)移前要充分混合。
      3.啟動(dòng)介電電泳場(chǎng),其振幅通常小于200V/cm,頻率在2MHz以內(nèi),用顯微鏡檢測(cè)細(xì)胞是否排成一條鏈,調(diào)節(jié)振幅和頻率以達(dá)到最佳效果。
      4.讓介電電泳場(chǎng)開約1分鐘后關(guān)掉,立即應(yīng)用融合脈沖,其振幅數(shù)量級(jí)為1kV/cm。脈沖寬度小于1ms。在進(jìn)行融合脈沖后立即再次啟動(dòng)介電電泳場(chǎng),常規(guī)讓其開啟約2分鐘。
      5.關(guān)掉介電電泳場(chǎng),讓細(xì)胞在樣品池中靜置10分鐘。
      6.去掉FM,用普通培養(yǎng)基再次洗滌細(xì)胞。
      7.將細(xì)胞轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)皿,加入普通培養(yǎng)基,在培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

      【注 意 事 項(xiàng)】
      1.最優(yōu)組分依使用的特定細(xì)胞種類而有明顯的變化。如果努力優(yōu)化電壓和脈沖寬度電穿孔結(jié)果仍不令人滿意,就應(yīng)嘗試改變穿孔介質(zhì)。
      2.影響電穿孔/電融合的另一重要因素與細(xì)胞狀態(tài)有關(guān),為達(dá)到最高效率,必須收集對(duì)數(shù)生長中期的細(xì)胞。

       

       

       
      推薦圖文
      推薦食品專題
      點(diǎn)擊排行
       
       
      Processed in 5.861 second(s), 1346 queries, Memory 3.75 M