進(jìn)入微生物室的物品通過傳遞窗，經(jīng)過紫外消毒后進(jìn)入微生物室。為了確認(rèn)傳遞窗紫外燈的消毒效果，特起草本方案對其進(jìn)行驗證。本驗證用于QC微生物室、無菌室傳遞窗紫外燈表面消毒效果檢查。

3.1滅菌刻度吸管（1mL，10mL）

3.2滅菌試管

3.3滅菌平皿

3.4酒精燈

3.5載體：（1.0×1.0cm的玻片）

4.1純化水 

4.2營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基

4.3改良馬丁瓊脂培養(yǎng)基

4.4營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基

4.5改良馬丁培養(yǎng)基

4.6金黃色葡萄球菌[CMCC（B）26 003]

4.7枯草芽孢桿菌[CMCC（B）63 501]

4.8大腸桿菌[CMCC（B）44 102]

4.9白色念珠菌[CMCC（F）98 001]

4.10稀釋液（0.1％吐溫80，0.1％蛋白胨溶液）

5.1 試驗環(huán)境

試驗在潔凈度10 000級下的局部潔凈度100級的單向流空氣區(qū)域內(nèi)進(jìn)行，全過程嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作。單向流空氣區(qū)、工作臺面及環(huán)境定期按《醫(yī)藥工業(yè)潔凈室（區(qū)）懸浮粒子、浮游菌和沉降菌的測試方法》的現(xiàn)行國家標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行潔凈度驗證。

ÿ次操作開始前，開紫外燈照射1小時。

5.2 培養(yǎng)基的制備

5.2.1營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基
配方：

營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基粉  31.0g

純化水     1000mL

配制：

根據(jù)需要量稱取營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基粉置適宜容器中，按配方比例加入純化水，水浴加熱使溶解，調(diào)pH至7.1±0.2，分裝于適宜容器，置高壓滅菌器滅菌121℃×15分鐘。

5.2.2 改良馬丁瓊脂培養(yǎng)基
配方：

改良馬丁瓊脂培養(yǎng)基粉    42.0g

純化水             1000mL

配制：

根據(jù)需要量稱取改良馬丁瓊脂培養(yǎng)基粉，按配方比例加入純化水，水浴加熱使溶解，調(diào)pH至6.4±0.2，分裝于適宜容器，置高壓滅菌器滅菌115℃×20分鐘。

5.2.3 營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基
配方：

營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基    20g

純化水       1000mL

配制：

稱取營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基20克，加1000mL純化水，加熱溶解，加熱至沸，冷卻至常溫，分裝于適宜容器，置高壓滅菌器滅菌121℃×15分鐘。

5.2.4改良馬丁培養(yǎng)基
配方：

改良馬丁培養(yǎng)基粉    28.0g

純化水       1000mL

配制：

根據(jù)需要量稱取改良馬丁培養(yǎng)基粉，按配方比例加入純化水，水浴加熱使溶解，調(diào)pH至6.4±0.2，分裝于適宜容器，置高壓滅菌器滅菌115℃×20分鐘。

5.3方法驗證試驗

5.3.1輻照強(qiáng)度測定

5.3.1.1開啟紫外燈5min后，用中心波長為253.7nm的紫外線強(qiáng)度測定儀在燈管下方垂直1m的中心處測量其輻照度值（uW/cm²）。

5.3.1.2測量時，電壓應(yīng)穩(wěn)定在220V。

5.3.1.3普通型或低臭氧型直管紫外線燈（30W），在燈管下方垂直1m的中心處，新燈管的輻照度值應(yīng)≥90 uW/cm² 。使用中的燈管的輻照度值應(yīng)≥70 uW/cm² ，低于此值者應(yīng)予更換。

5.3.2 照射劑量

表面消毒接受的照射劑量，應(yīng)達(dá)殺滅目標(biāo)微生物所需。對大腸桿菌，照射劑量應(yīng)達(dá)到7.5×103 uW·s/cm²,對金黃色葡萄球、白色念珠菌、枯草芽孢桿菌應(yīng)達(dá)到2.53×104uW·s/cm²。

5.3.2.1照射劑量計算：

照射劑量（uW·s/cm² ）＝紫外燈管強(qiáng)度（uW/cm²）×?xí)r間（s）

5.3.3  細(xì)菌及其芽孢和真菌殺滅效果的測定

5.3.3.1菌液的制備   

金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、大腸桿菌、白色念珠菌培養(yǎng)后，將菌液進(jìn)行活菌計數(shù)。

5.3.3.2 將滅菌載體平放于滅菌平皿內(nèi)，ÿ個載體滴注定量菌懸液，（載體回收菌量達(dá)5×10⁵～5×10⁶cfu/片），涂勻，放37℃培養(yǎng)箱烘干。開啟紫外燈5min后，將16個染菌玻片平放于滅菌平皿內(nèi)，水平放于適當(dāng)距離照射，于4個不同間隔時間（15min、30 min、45 min、60 min）各取出4個染菌玻片，分別投入4個盛有5mL洗脫液試管中，振打80次。

5.3.3.3經(jīng)適當(dāng)稀釋后，取1mL洗脫液，作平板傾注，ÿ個染菌玻片接種兩個，細(xì)菌放30～35℃培養(yǎng)48小時作活菌計數(shù)，真菌放23～28℃培養(yǎng)72小時作活菌計數(shù)。

5.3.3.4陽性對照，除不做照射處理外，取4個染菌玻片，分別投入4個盛有5ml洗脫液試管中，振打80次。余按7.4.2.3同樣操作。

5.3.3.5計算殺滅率         

殺滅率（％）＝ （陽性對照回收菌數(shù)－試驗組回收菌數(shù)）/陽性對照回收菌數(shù) ×100％

5.3.3.6判定標(biāo)準(zhǔn)     對指示菌殺滅率≥99.9％判為消毒合格。

附件1. 試驗菌數(shù)量測定原始記¼

傳遞窗構(gòu)造或紫外燈管放置λ置發(fā)生改變時。

QA必須參與驗證的評審階段；
QA必須審閱最終報告（包括草案）；

QA審閱者不應(yīng)是參與實施的其他QA人員。

在實施過程中，如果方案需要修改，必須提交書面的報告，闡述修改的原因，修改的內(nèi)容，并經(jīng)過驗證小組負(fù)責(zé)人及QA的認(rèn)可。修改后的方案同先前執(zhí)行的方案一起歸檔。

所有的相關(guān)文檔都應(yīng)該保留至少5年，這些文檔應(yīng)包括如下內(nèi)容：

原始方案、修改后的方案（如果有的話）、偏差報告、原始數(shù)據(jù)、原始報告和最終報告、其中，報告應(yīng)該包括以下內(nèi)容：

記¼的原件（或復(fù)印件）、測試項目及條款、實驗開始和結(jié)束的日期、材料和方法描述、出現(xiàn)的偏差描述（如果有的話）、實驗結(jié)果。