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      膠體金標(biāo)記蛋白的制備

      放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-07-06

      膠體金對(duì)蛋白的吸附主要取決于pH值,在接近蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)或偏堿的條件下,二者容易形成牢固的結(jié)合物。如果膠體金的pH值低于蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)時(shí),則會(huì)聚集而失去結(jié)合能力。除此以外膠體金顆粒的大小、離子強(qiáng)度、蛋白質(zhì)的分子量等都影響禾褰鷯氳鞍字實(shí)慕岷稀?B>
      1.待標(biāo)記蛋白溶液的制備 將待標(biāo)記蛋白預(yù)先對(duì)0.005Mol/L pH7.0 NaCl溶液中4℃透析過(guò)夜,以除去多余的鹽離子,然后100 000g4℃離心1h,去除聚合物。
      2.待標(biāo)膠體金溶液的準(zhǔn)備 以0.1Mol/L K2CO3或0.1Mol/L HCl調(diào)膠體金液的pH值。標(biāo)記IgG時(shí),調(diào)至9.0;標(biāo)記McAb時(shí),調(diào)至8.2;標(biāo)記親和層析抗體時(shí),調(diào)至7.6;標(biāo)記SPA時(shí),調(diào)至5.9~6.2;標(biāo)記ConA時(shí),調(diào)至8.0;標(biāo)記親和素時(shí),調(diào)至9~10。
      由于膠體金溶液可能損壞pH計(jì)的電板,因此,在調(diào)節(jié)pH時(shí),采用精密pH試紙測(cè)定為宜。
      3.膠體金與標(biāo)記蛋白用量之比的確定
      (1)根據(jù)待標(biāo)記蛋白的要求,將膠體金調(diào)好pH之后,分裝10管,每管1ml。
      (2)將標(biāo)記蛋白(以IgG為例)以0.005Mol/L pH9.0硼酸鹽緩沖液做系列稀釋為5µg/ml~50µg/ml,分別取1ml,加入上列金膠溶液中,混勻。對(duì)照管只加1ml稀釋液。
      (3)5min后,在上述各管中加入0.1ml 10%NaCl溶液,混勻后靜置2h,觀察結(jié)果。
      (4)結(jié)果觀察,對(duì)照管(未加蛋白質(zhì))和加入蛋白質(zhì)的量不足以穩(wěn)定膠體金的各管,均呈現(xiàn)出由紅變藍(lán)的聚沉現(xiàn)象;而加入蛋白量達(dá)到或超過(guò)最低穩(wěn)定量的各管仍保持紅色不變。以穩(wěn)定1ml膠體金溶液紅色不變的最低蛋白質(zhì)用量,即為該標(biāo)記蛋白質(zhì)的最低用量,在實(shí)際工作中,可適當(dāng)增加10%~20%。
      4.膠體金與蛋白質(zhì)(IgG)的結(jié)合 將膠體金和IgG溶液分別以0.1Mol/L K2CO3調(diào)pH至9.0,電磁攪拌IgG溶液,加入膠體金溶液,繼續(xù)攪拌10min,加入一定量的穩(wěn)定劑以防止抗體蛋白與膠體金聚合發(fā)生沉淀。常用穩(wěn)定劑是5%胎牛血清(BSA)和1%聚乙二醇(分子量20KD)。加入的量:5%BSA使溶液終濃度為1%;1%聚乙二醇加至總?cè)芤旱?/10。
      5.膠體金標(biāo)記蛋白的純化
      (1)超速離心法:根據(jù)膠體金顆粒的大小,標(biāo)記蛋白的種類(lèi)及穩(wěn)定劑的不同選用不同的離心速度和離心時(shí)間。
      用BSA做穩(wěn)定劑的膠體金—羊抗兔IgG結(jié)合物可先低速離心(20nm金膠粒用1 200r/min,5nm金膠粒用1 800r/min)20min,棄去凝聚的沉淀。然后將5nm膠體金結(jié)合物用6 000g,4℃離心1h;20nm~40nm膠體金結(jié)合物,14 000g,4℃離心1h。仔細(xì)吸出上清,沉淀物用含1%BSA的PB液(含0.02%NaN3),將沉淀重懸為原體積的1/10,4℃保存。如在結(jié)合物內(nèi)加50%甘油可貯存于-18℃保存一年以上。
      為了得到顆粒均一的免疫金試劑,可將上述初步純化的結(jié)合物再進(jìn)一步用10%~30%蔗糖或甘油進(jìn)行密度梯度離心,分帶收集不同梯度的膠體金與蛋白的結(jié)合物。
      (2)凝膠過(guò)濾法:此法只適用于以BSA作穩(wěn)定劑的膠體金蛋白結(jié)合物的純化。將膠體金蛋白結(jié)合物裝入透析袋,在硅膠中脫水濃縮至原體積的1/5~1/10。再經(jīng)1 500r/min離心20min。取上清加至Sephacryl S-400(丙烯葡聚糖凝膠S-400)層析柱分別純化。層析柱為0.8 cm×20cm,加樣量為床體積的1/10,以0.02Mol/L PBS液洗脫(內(nèi)含0.1%BSA,0.05%NaN3,pH8.2者用IgG標(biāo)記物),流速為8ml/h。按紅色深淺分管收集洗脫液。一般先濾出的液體為微黃色,有時(shí)略混濁,內(nèi)含大顆粒聚合物等雜質(zhì)。繼之為純化的膠體金蛋白結(jié)合物,隨濃度的增加而紅色逐漸加深,清亮透明,最后洗脫出略帶黃色的為標(biāo)記的蛋白組分。將純化的膠體金蛋白結(jié)合物過(guò)濾除菌、分裝,4℃保存。最終可得到70%~80%的產(chǎn)量。
      6.膠體金蛋白結(jié)合物的質(zhì)量鑒定
      (1)膠體金顆粒平均直徑的測(cè)量:用支持膜的鎳網(wǎng)(銅網(wǎng)也可)蘸取金標(biāo)蛋白試劑,自然干燥后直接在透射電鏡下觀察;蛴么姿徕檹(fù)染后觀察。計(jì)算100個(gè)金顆粒的平均直徑。
      (2)膠體金溶液的OD520nm值測(cè)定:膠體金顆粒在波長(zhǎng)510nm~550nm之間出現(xiàn)最大吸收值峰。用0.02Mol/L pH8.2 PBS液(含1%BSA,0.02%NaN3)將膠體金蛋白試劑作1︰20稀釋?zhuān)琌D520=0.25左右。一般應(yīng)用液的OD520應(yīng)為0.2~0.4。
      (3)金標(biāo)記蛋白的特異性與敏感性測(cè)定:采用微孔濾膜免疫金銀染色法(MF-IGSSA)。將可溶性抗原(或抗體)吸附于載體上(濾紙、硝酸纖維膜、微孔濾膜),用膠體金標(biāo)記的抗體(或抗原)以直接或間接染色法并經(jīng)銀顯影來(lái)檢測(cè)相應(yīng)的抗原或抗體,對(duì)金標(biāo)記蛋白的特異性和敏感性進(jìn)行鑒定。

       

       

       

       
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