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      功能基因組學(xué)研究新方法——雙色紅外熒光檢測(cè)技術(shù)

      放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-06-28

      基因組序列的迅速獲得推動(dòng)了一門(mén)新興學(xué)科——功能基因組學(xué)的發(fā)展,這一學(xué)科重點(diǎn)關(guān)注基因功能的變化。擴(kuò)增性片段長(zhǎng)度多態(tài)性(Amplified restriction fragment length polymorphism,AFLP)分析以及反向遺傳學(xué)都是功能基因組學(xué)的重要組成部分。
        傳統(tǒng)的反向遺傳學(xué),例如用轉(zhuǎn)座子(transposon)敲除特定基因,雖然可以準(zhǔn)確測(cè)定表型,但需要進(jìn)行耗時(shí)的轉(zhuǎn)基因或復(fù)雜的組織培養(yǎng)。而且由于這種基因敲除的方法將整個(gè)基因敲除,無(wú)法觀(guān)察到活性基因功能部分缺失的結(jié)果。
        為克服此基因敲除方法的局限性,進(jìn)一步獲得關(guān)于活性基因突變的信息,F(xiàn)red Hutchinson癌癥研究中心的研究者們發(fā)明了一種定向誘導(dǎo)基因組局部突變(TILLING: Targeting Induced Local Lesions In Genomes)技術(shù)。該方法具有簡(jiǎn)單高效的特點(diǎn),它利用化學(xué)突變方法來(lái)獲得所有基因的傳統(tǒng)的點(diǎn)突變等位基因系列。對(duì)那些表型分析時(shí)會(huì)牽涉到亞致死等位基因的重要基因,TILLING的方法具有其獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)。隨著TILLING方法有效應(yīng)用到越來(lái)越多的生物種類(lèi),如果蠅,擬南芥,斑馬魚(yú),玉米等,它在遺傳學(xué)研究方面的重要價(jià)值也越發(fā)體現(xiàn)出來(lái)。
        但由于點(diǎn)突變一般很難被檢測(cè)出來(lái),一直是TILLING技術(shù)應(yīng)用上的一個(gè)障礙。要得到好的結(jié)果,要求檢測(cè)儀器不僅靈敏度高,還能夠識(shí)別假陽(yáng)性位點(diǎn)。我們?cè)谶@兒給大家引薦一種更簡(jiǎn)便,靈敏,準(zhǔn)確的高通量TILLING分析技術(shù):雙色紅外熒光檢測(cè)技術(shù)。
        雙色紅外熒光檢測(cè)技術(shù)是美國(guó)LI-COR公司的專(zhuān)利技術(shù)。LI-COR長(zhǎng)期致力于此項(xiàng)技術(shù)在生物學(xué)研究中的應(yīng)用,他們開(kāi)發(fā)的Odyssey雙色熒光掃描系統(tǒng)及DNA遺傳分析系統(tǒng)都取得了很大成功。由于雜質(zhì)、干擾分子在紅外區(qū)幾乎不發(fā)光,用紅外熒光進(jìn)行檢測(cè)的背景非常低,靈敏度很高,可檢測(cè)到低達(dá)15amoles的熒光分子。加上雙通道檢測(cè)(680nm激發(fā),710nm檢測(cè);780nm激發(fā),820nm檢測(cè)),兩個(gè)通道檢測(cè)波長(zhǎng)相距110nm,相對(duì)于通常的可見(jiàn)熒光四色檢測(cè)來(lái)說(shuō),幾乎沒(méi)有光譜重疊的干擾(見(jiàn)下圖),保證了TILLING分析中每一個(gè)突變堿基的準(zhǔn)確識(shí)別及整個(gè)檢測(cè)的靈敏度。
        以下就具體給大家介紹雙色紅外熒光檢測(cè)技術(shù)在反向遺傳學(xué)中與TILLING法結(jié)合的應(yīng)用,及基于雙色紅外熒光檢測(cè)技術(shù)的LI-COR 4300 DNA分析系統(tǒng)與之相應(yīng)的技術(shù)優(yōu)勢(shì)。
      紅外熒光檢測(cè)技術(shù)在反向遺傳學(xué)中的應(yīng)用
        將紅外檢測(cè)技術(shù)同TILLING技術(shù)結(jié)合,其優(yōu)勢(shì)已經(jīng)被全世界許多實(shí)驗(yàn)室證實(shí)。美國(guó)國(guó)家科學(xué)基金會(huì)植物基因組計(jì)劃(NSF Plant Genome Research Program (PGRP))近年來(lái)大力發(fā)展高通量TILLING,并直接推動(dòng)了以美國(guó)為首的北美實(shí)驗(yàn)室聯(lián)合啟動(dòng)擬南芥 TILLING項(xiàng)目(ATP:Arabidopsis TILLING Project)。該項(xiàng)目組使用 LI-COR DNA 分析系統(tǒng)在其成立的第一年就為擬南芥研究者們提供了100多個(gè)基因上的1000多個(gè)突變位點(diǎn)。本文就以此為例來(lái)介紹紅外熒光檢測(cè)技術(shù)在反向遺傳學(xué)中的應(yīng)用。
      1 對(duì)擬南芥種子進(jìn)行誘導(dǎo)處理產(chǎn)生一系列點(diǎn)突變
      2 將種子培養(yǎng),獲得第一代擬南芥突變個(gè)體
      3 第一代植株自花授粉,產(chǎn)生第二代
      4 將第二代植株種子收集,抽提DNA,存放于96孔板
      5 將多個(gè)96孔板的樣本合并到1個(gè)96孔板內(nèi)(最多可合并8個(gè)),用兩對(duì)特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,兩對(duì)引物分別用700nm和800nm熒光染料標(biāo)記。
      6 對(duì)擬南芥種子進(jìn)行誘導(dǎo)處理產(chǎn)生一系列點(diǎn)突變
      7 將種子培養(yǎng),獲得第一代擬南芥突變個(gè)體
      8 將第二代植株種子收集,抽提DNA,存放于96孔板
      9 分別得到700nm和800nm兩張圖。發(fā)生突變的泳道,在700nm的圖上可以在野生型條帶下方看到一個(gè)條帶,同時(shí)在800nm的圖上相同的泳道也會(huì)有一個(gè)條帶,這兩個(gè)條帶就是CEL I核酸酶的剪切產(chǎn)物,兩個(gè)條帶片斷大小之和等于擴(kuò)增片段的大小,從而很容易對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行突變檢測(cè)
      10 當(dāng)混合樣本檢測(cè)到突變后,要對(duì)混合樣本中的每個(gè)DNA樣本再次進(jìn)行篩選,檢測(cè)出發(fā)生突變的DNA樣本。

      TILLING技術(shù)路線(xiàn)
      技術(shù)關(guān)鍵一:獲得高質(zhì)量的TILLING圖像
        將紅外熒光檢測(cè)技術(shù)與TILLING技術(shù)結(jié)合后,可以同時(shí)獲得兩張真實(shí)的電泳圖像(700nm和800nm)。應(yīng)用TILLING技術(shù)時(shí),獲得未經(jīng)修改的圖像原始數(shù)據(jù)對(duì)于檢測(cè)的靈敏度和準(zhǔn)確性都很重要。如果檢測(cè)系統(tǒng)在檢測(cè)時(shí)對(duì)熒光數(shù)據(jù)已經(jīng)進(jìn)行了處理,很可能會(huì)過(guò)濾掉大部分甚至是全部的突變信息。
      技術(shù)關(guān)鍵二:雙色成像能有效排除假陽(yáng)性突變
        通過(guò)PCR反應(yīng)得到的異源核酸雙鏈分子在堿基錯(cuò)配處被切斷。由于兩個(gè)剪切片斷采用不同的熒光染料標(biāo)記,如果真的發(fā)生了突變,雙色檢測(cè)時(shí)將在野生型條帶下面出現(xiàn)兩個(gè)突變條帶,分別位于700nm和800nm電泳圖的同一泳道。同時(shí),這兩個(gè)突變條帶的分子量之和應(yīng)該等于野生型條帶的分子量,因而雙色檢測(cè)能夠有效排除假陽(yáng)性點(diǎn)突變,準(zhǔn)確度很高。
      技術(shù)關(guān)鍵之三:高靈敏度的紅外檢測(cè)
        由于核酸外切酶活性會(huì)導(dǎo)致一些信號(hào)丟失,應(yīng)用紅外檢測(cè)技術(shù)提高靈敏度對(duì)于TILLING檢測(cè)非常重要。紅外熒光檢測(cè)相對(duì)可見(jiàn)光檢測(cè)具有背景低、靈敏度高的優(yōu)點(diǎn)。此外,結(jié)合紅外熒光染料后,該檢測(cè)方法還具有另一個(gè)優(yōu)點(diǎn)——寬廣的線(xiàn)性范圍。這一特點(diǎn)使得強(qiáng)信號(hào)和弱信號(hào)能夠同時(shí)被分辨,當(dāng)野生型條帶的信號(hào)強(qiáng),突變型條帶信號(hào)弱時(shí),LI-COR DNA分析系統(tǒng)也能夠輕松識(shí)別突變。

      高通量的突變篩選
        結(jié)合4300分析系統(tǒng),TILLING作為一種高通量的篩選技術(shù),其通量可達(dá)到:
      每塊膠可檢測(cè)750,000堿基對(duì)
      每天可檢測(cè)2000樣本
      每天可檢測(cè)2百萬(wàn)堿基對(duì)
      每個(gè)樣本可檢測(cè)1000個(gè)堿基


      應(yīng)用Tilling 技術(shù)發(fā)表的一些文獻(xiàn):
      1. Till, B.J., Reynolds, S.H., Greene, E.A., Codomo, C.A., Enns, L.C., Johnson, J.E., Burtner, C., Odden, A.R., Young K., Taylor, N.E., Henikoff, J.G., Comai, L., and Henikoff, S. 2003. Large-Scale Discovery of Induced Point Mutations With High-Throughtput TILLING. Genome Research 13:524-530.
      2. Henikoff, S., and Comai, L. 2003. Single-Nucleotide Mutations for Plant Functional Genomics. Annual Review of Plant Biology. 54:15.1-15.27.
      3. Colbert, T., Till, B.J., Tompa, R., Reynolds, S., Steine, M.N., Yeung, A.T., McCallum, C.M., Greene, Comai, L., and Henikoff, S. 2001. High Throughtput Screening for Induced Point Mutations. Plant Physiology 126: 480-484.
      4. McCallum, C.M., Comai, L., Greene, E.A., and Henikoff, S. 2000. Target Induced Local Lesions In Genomes (TILLING) for Plant Functional Genomics. Plant Physiology 123:439–442.

      紅外熒光檢測(cè)技術(shù)在A(yíng)FLP研究中的應(yīng)用
        除了以上提到的反向遺傳學(xué)中的應(yīng)用外,紅外熒光檢測(cè)技術(shù)在A(yíng)FLP研究中的應(yīng)用也日益廣泛。該領(lǐng)域的許多文章都使用LI-COR DNA 分析系統(tǒng)完成。LI-COR公司針對(duì) AFLP研究提供包括試劑、儀器、分析軟件在內(nèi)的全套AFLP分析解決方案,不僅能進(jìn)行傳統(tǒng)的基因組AFLP分析,還提供專(zhuān)門(mén)的試劑盒進(jìn)行表達(dá)性的cDNA AFLP分析,如果結(jié)合LI-COR的Odyssey紅外熒光掃描成像系統(tǒng),還可將AFLP電泳條帶回收進(jìn)行進(jìn)一步的研究,為研究者提供了極大的便利。分析軟件方面,LI-COR公司秉承了其“功能細(xì)致強(qiáng)大,自動(dòng)化程度高”的一貫優(yōu)點(diǎn),僅針對(duì)AFLP一項(xiàng)就有Gene ImagIRTM, SAGAMX, AFLP QuantarTM Pro三種不同的軟件,分別滿(mǎn)足一般性用戶(hù)、專(zhuān)業(yè)用戶(hù)和特殊的共顯性分析的需要,徹底解決了數(shù)據(jù)分析的瓶頸制約。

      AFLP相關(guān)文獻(xiàn):
      1. Identification on Commercialized Products of AFLP Markers Able To Discriminate Slow- from Fast-Growing Chicken Strains。OLIVIER FUMIEÅ RE,*,† MARC DUBOIS,† DIMITRIE GREÄ GOIRE,† ANDREÄ THEÄ WIS,‡ ANDGILBERT BERBEN†J. Agric. Food Chem. 2003, 51, 1115-1119
      2. High-Throughput AFLP® Analysis Using Infrared Dye-Labeled Primers and anAutomated DNA Sequencer. A.A. Myburg, D.L. Remington, D.M. O'malley, R.R.Sederoff, and R.W. Whetton. BioTechniques 2001, 30(2): 348-357.
      3. Construction of an AFLP® genetic map with nearly complete genome coverage in Pinus taeda. D.L. Remington, R.W. Whetten, B.-H. Liu, D.M. O'Malley.Theoretical Applied Genetics 1999, 98:1279-1292. 
      4. NA Inter-MITE polymorphisms (IMP): a high throughput transposon-based genomema pping and fingerprinting approach. R.-Y. Chang, L.S. O'Donoughue, and T.E. Bureau. Theoretical Applied Genetics 2001, 102:773-781.

       

       

       
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